Paris/July 19
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+ | Je voulais faire une ribambelle de digestions. Malheureusement, la plaque UV a planté (donc impossible de faire les analyses intermédiaires dans les doubles digestions croisés, ni de purifier les produits de digestion !) j’ai donc renoncé à faire les digestions ce soir ! | ||
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+ | La description détaillée des réactions de digestions à réaliser est dans le cahier de manip. Je ferais les digestions (et les ligations-transformations qui suivent logiquement) Samedi si la plaque UV est guérie ! | ||
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+ | Remarque d’ordre général sur les double digestions par les enzymes a biobriques : | ||
+ | D’après le site du fabriquant (New England Biolabs), les tampons pour double digéstions optimales ne sont pas celles que vous avez utilisés. | ||
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+ | EcoRI a son propre tampon (NEB-U), je pense que c’est pour cela que les dig. Avec EcoRI n’ont pas fonctionné. | ||
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+ | pour plus de détail sur les doubles dig. Comptant EcoRI : | ||
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+ | Je voulais faire des PCR, mais les fiches des oligos stocks n’étant pas dans le classeur= connais pas les [] des oligos stocks, peux pas faire les dilutions à 10μM, peux pas lancer les PCR ! | ||
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+ | Dommage | ||
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+ | Plus d’organisation svp ! |
Revision as of 22:21, 19 July 2007
Contents |
FtsZTS strain screening
We want to test these strains :
- 121.4
- 121.5
- 121.6
- 129
- 1.129
- DCR 14.1
- DCR 14.2
- DCR 14.3
I made glycerol stock of these strains, stored in the freezer. Test :
- Spread these strains on two plates (preheated before spreading) :
- One at 30°C
- One at 42°C
Results : every strain grew at 30 and 42°C => fail. >br >br
ON Bacterial cultures
We launched several cultures :
- MG1655 -> to do transductions tomorrow (don't forget the DAP, David!)
- pJ23107_J61002 clones 3 & 4 in LB-Amp liquid; also striping clones 3-18 on LB-Amp Agar plates
- I0500_pSB2K3 clones 1 & 2 in LB-Kan liquid medium
- B0015_pSB1AK3 clones 3 & 4 in LB-Kan liquid medium
Tomorrow (20/07/07): perform transduction (MG1655), minipreps, glycerol stocks
Digestions
Je voulais faire une ribambelle de digestions
Je voulais faire une ribambelle de digestions. Malheureusement, la plaque UV a planté (donc impossible de faire les analyses intermédiaires dans les doubles digestions croisés, ni de purifier les produits de digestion !) j’ai donc renoncé à faire les digestions ce soir !
La description détaillée des réactions de digestions à réaliser est dans le cahier de manip. Je ferais les digestions (et les ligations-transformations qui suivent logiquement) Samedi si la plaque UV est guérie !
Remarque d’ordre général sur les double digestions par les enzymes a biobriques : D’après le site du fabriquant (New England Biolabs), les tampons pour double digéstions optimales ne sont pas celles que vous avez utilisés.
EcoRI a son propre tampon (NEB-U), je pense que c’est pour cela que les dig. Avec EcoRI n’ont pas fonctionné.
Pour le détail : tampons en double digestions :
http://www.neb.com/nebecomm/tech_reference/restriction_enzymes/double_digests.asp
pour plus de détail sur les doubles dig. Comptant EcoRI :
http://www.neb.com/nebecomm/tech_reference/restriction_enzymes/buffer_activity_unique_re.asp
PCR
Je voulais faire des PCR, mais les fiches des oligos stocks n’étant pas dans le classeur= connais pas les [] des oligos stocks, peux pas faire les dilutions à 10μM, peux pas lancer les PCR !
Dommage
Plus d’organisation svp !